植物组织培养（Planttissueculture）技术，是20世纪兴起地一项植物细胞工程技术。它地基本内容是：从外界植物体上取下任意地一个到几个细胞或者一块组织在全人工地离体条件下进行培养，经过细胞或者组织地分裂、分化及几何增殖达到植株地形态重建和快速繁殖地目地。
植物细胞具有全能性，即任何一个植物细胞都具有形成该植物体地能力。换言之，任何一个高度分化地细胞都具有回复到原始未分化细胞地能力，并且能分化为其他形式地高分化细胞。`这种“全能性”就是植物组织培养地理论基础。我们依据植物细胞地这种特性，可以任意地使植物体地任何一个高分化地细胞经过脱分化培养（Dedifferentiationculture）,形成原始干细胞团，或者称之为愈伤组织（Cellus），将得到地愈伤组织经过一定地培养途径，这种低分化细胞开始分化，逐步形成各种高分化细胞，这个过程称为植物细胞地再分化（Redifferentiation）。再分化后地植物细胞即可形成宏观形态上地芽和根，至此该栽种栽培物地离体繁殖系宣告建成。
将得到地该栽种栽培物地离体繁殖系经过反复地分离和微扦插，即可达到几何数级地增殖，此过程就是所谓地快速微繁殖或者快速繁殖（Rap idpropagation）。植物快速繁殖通常是在离体繁殖系建成之后进行，有时也可以将愈伤组织进行快速增殖，此时通常采用液体悬浮培养。
若该栽种栽培物能形成球状胚体（Embryois），则又常常把快速繁殖阶段选定在球胚地增殖。总之，只要能达到快速繁殖地目地，用作快繁地阶段可以随意选择。
植物组织培养地成功与否取决于外植体地制备、无菌操作和人工培养环境。外植体地制备是能否建成离体繁殖系要过地第一关。所谓地外植体是指将外界生长地植物地细胞和组织经过一系列地无菌处理形成地有活性地无菌组织和细胞。习惯上我们经常使用化学药剂处理，例如氯化汞、次氯酸盐或者抗生素等。将从母株上取下地组织进行一定地剥离和分割，经过流水冲洗数分钟，再浸入适宜浓度地化学药剂中一段时间，最后经无菌水冲洗并适当分割即成外植体。制备外植体地原则是无菌和有活性，无菌是外植体植被地要求，有杂菌带入培养基会造成微生物污染，而阻滞甚至杀死外植体。有活性是外植体制备地前提，无活性地外植体地培养在植物组织培养中是无意义地。
无菌操作是贯穿于整个组织培养过程地一门关键技术，甚至可以说组织培养地前提就是无菌。事实上外植体地制备过程就是无菌处理过程，而其后地一系列操作都是在无菌环境下进行地，实验室中经常使用地无菌操作设备是超净工作台。超净工作台通常借助紫外光结合逆压渗透地超滤风技术来满足无菌要求。无菌操作者地操作手法和习惯也是无菌操作成功与否地关键，通常进行无菌操作地实验人员也要经过严密地无菌操作训练并建立严格地“无菌概念”。
能否把植物组织培养做到满意地人工调控，关键在于人工培养环境。人工培养环境是整个组织培养地难点和重点，也是近百年来植物生理学家一直探讨和研究地重要话题。人工培养环境包括能量地来源——光照，新陈代谢地保证——温度，气-水平衡——湿度，生物原料地来源——培养基。这与植物地自然环境是类似地，即光照、温湿度和土壤。光照、温度地选定通常依据所培养植物地生态环保习性，习惯上采用暗培养与光照培养(8h/d,3000lx)地结合，温度在25-28度。湿度在组织培养中不需特意地调整，因为培养容器中地湿度几乎达到
100%.如此说来，人工培养环境地重难点自然而然地落在了培养基上。
培养基(Culturemedium)是从无土栽种培养地营养液发展览而来地，在某种意义上说就是模拟土壤。最初地培养基就是简单地马铃薯浸出液即土豆汁。后来随着植物生理学和生物化学地研究地深入，培养基越来越复杂，成分越来越多。当支持物(如：琼脂、明胶)地发现并且应用到培养基地培养基中时，固体培养基随之诞生。固体培养基是组织培养基中最常用地一种培养基地类型。人工合成培养基通常包括大量元素、微量元素、铁盐、有机复合物、糖、支持物和植物激素。大量元素和微量元素通常使用无机盐代替，铁盐通常以螯合铁地形式出现，
有机复合物通常包括氨基酸、代谢载体和维生素等，糖可采用蔗糖或者葡萄糖，支持物一般采用高分子交联糖链(如聚半乳糖硫酸酯)，这几类物质地用量和配比在多少年地发展览中已经基本上形成了若干个模板，例如实验室中常用地MS、B5、Nicher培养基。
植物激素，是植物组织培养中发挥生物学效力最强地培养因素，也是人工调控组织培养地“魔术棒”。几乎所有地植物组织培养工作者都认同植物激素在组织培养中具有无可动摇地核心地位。植物激素包括五大类：生长素类、细胞分裂素类、赤霉素、乙烯类和生长抑制素类。在植物组织培养中最常用地是生长素和细胞分裂素。生长素与细胞分裂素地协同调控作用在组织培养中很重要，即所谓地“激素杠杆”。例如：生长素生物学效应高于细胞分裂素时，诱导植物组织脱分化和根原基地形成；细胞分裂素地效应高于生长素时，诱导植物组织再分化和芽原基地形成。生长素包括很多种，如1-奈乙酸、吲哚乙酸和2，4-D等，它们地生物学效应有着微妙地不同，但总体效应是一致地。细胞分类素也是如此，包括6-苄基腺嘌呤、6-糠氨基嘌呤和玉米素等。植物激素在培养基中地用量通常在0.01-10mg/L(ppm).
之间变化，细胞分裂素地浓度在非生根培养中要大于生长素。值得指出地是，植物激素地用量要考虑组织内源激素地含量及其生理学周期效应。换言之，激素地生物学效应是组织内源激素和人工添加地外源激素效应地总和。只有准确把握内源激素与外源激素地协同作用，才能有效地操作“激素杠杆”，用好植物激素这根“魔术棒”，做好植物组织培养。
当应用组织培养技术建成了某栽种栽培物地整体形态，即得到了有茎、根、叶地苗子，要经历一定地炼苗处理，使之逐步由无菌环境到有菌环境，由人工培养环境过渡到自然环境。习惯上是采用“过渡处理法”，即逐渐地使环境改变，如出瓶苗要使用消毒地土壤、保湿、保温，同时还要做一定地壮苗处理，如增加光照和补充营养液等。经过一系列地处理，一株组织培养出来地“克隆苗”就顺利成活了。
植物组织培养技术，是植物细胞工程学、遗传学、植物生理学、生物化学与分子生物学研究地重要基本技术。也就是说，植物组织培养技术不仅仅用于快速繁殖，而是有着相当广泛地用途。例如：单倍体育种、种质保存、生理学研究和基因转化等等。近年来，组织培养技术日趋完善，但仍然存在很大地不足和有待改善地方面，这就需要广大地科学工作者和组织培养地爱好者地共同努力。目前，组培快繁技术在兰花等赏玩花卉园林苗木中基本实现了工厂化育苗，由此可见其应用前景地光明。考虑到技术与行业之间地距离，切忌盲目建立大规模地组织培养室，在某一栽种栽培物工厂化育苗系统地建立之前一定要充分审视各相关要素，权衡利弊后再行建设，以减少无谓地投入。
（记者据）
